产品内容：...5×20ml...5×50ml...保存...试剂(A): PAS固定液...20ml...50ml...RT避光...试剂(A): 过碘酸溶液...20ml...50ml...4℃ 避光...试剂(B): Schiff Reagent...20ml...50ml...4℃ 避光...试剂(C): 亚硫酸钠溶液...20ml...50ml...RT 密闭...试剂(E): Mayer苏木素染色液...20ml...50ml...4℃ 避光...产品简介：...糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。...糖原PAS染色液(细胞专用)利用真菌含有多糖，过碘酸氧化真菌壁上的多糖而暴露出醛基，醛基与无色Schiff结合呈现红色。该染色法性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需0.5h；浓度低过碘酸更适用于对真菌染色，无盐酸乙醇分化液分化步骤。...自备材料：...1、? 蒸馏水...2、? 系列乙醇...操作步骤(仅供参考)：...1、? 细胞、骨髓涂片用PAS固定液固定10～15min。...2、? 水洗、晾干。...3、? 入过碘酸溶液，室温氧化15-20min。...4、? 自来水冲洗2次，蒸馏水浸洗2次。...5、? 入Schiff Reagent并加盖，置于室温阴暗处浸染10～20min。...6、? 亚硫酸钠溶液滴洗2次，每次2min。该步骤亦可省略。...7、? 流水冲洗2min。...8、? 入Mayer苏木素染色液，复染3～5min。水洗、晾干、镜检。...染色结果：...PAS反应阳性物质(糖原或多糖)...红色或紫红色...细胞核...蓝色...细胞质...深浅不一的红色...备注：颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。...阴性对照(可选)：...1、? 取淀粉酶1g溶解于PBS(pH5.3) 100ml，处理30～60min，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。...2、? (备选方案)取唾液片(过滤后用)处理30～60min，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。...3、? (备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入Schiff Reagent。结果应为阴性。...注意事项：...1、? 过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。...2、? 过碘酸溶液、Schiff Reagent使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。...3、? 过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。...4、? 如常规切片建议用糖原PAS染色液，因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度都相对高。...5、? 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。...